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(【关键词】 糖尿病; 皮肤溃疡; 转化生长因子β1; 大鼠
糖尿病溃疡是糖尿病的常见并发症之一。益气化瘀中药治疗糖尿病溃疡取得了良好疗效［1］，为进一步探讨其促进糖尿病溃疡创面愈合的机制，开展了本研究。
1 材料与方法
1.1 实验动物 清洁级2月龄SD大鼠60只，雄性，体质量200～250 g，平均（223.05±14.91）g，由中国科学院上海实验动物中心提供。动物合格证号：医动字第02222号。
1.2 药物 益气化瘀方由生黄芪、太子参、桃仁和地龙组成，剂量比例为2.5∶2.5∶1∶1，大鼠的剂量为11.61 g/(kg·d)，减压浓缩至浓度为含生药2.5 g/ml。拆方益气方由生黄芪和太子参组成，大鼠的剂量为6.75 g/(kg·d)，减压浓缩至浓度为含生药1.5 g/ml。拆方化瘀方由桃仁和地龙组成，大鼠的剂量为4.86 g/(kg·d)，减压浓缩至浓度为含生药1 g/ml［2］。均由上海中医药大学龙华医院制剂室按水煎醇沉工艺制备成煎剂浓缩，4 ℃冰箱保存备用。碱性成纤维细胞生长因子（basic fibroblast growth factor, bFGF）贝复济，珠海东大生物制药有限公司产品（批准号：国药准字S10980077）。
1.3 主要实验试剂 转化生长因子β1（transforming growth factorβ1, TGFβ1）一抗，Santa Cruz公司产品（Sc146），工作浓度1∶80；HRP标记山羊抗兔二抗，北京中山生物工程公司产品（ZB2301）；化学发光底物，Pierce公司产品；NC膜（0.45 μm），Millipore公司产品。
1.4 主要实验仪器 RM2145切片机，Leica公司产品；IMS细胞图像分析仪，上海申腾信息技术有限公司产品；MVCP410摄像机，Panasonic公司产品；BH2显微镜，Olympus公司产品；DYY8C电泳仪、DYCZ24D电泳槽和DYCZ40D转印槽，均为北京六一仪器厂产品；721分光光度计，上海分析仪器总厂产品。
1.5 糖尿病溃疡大鼠模型建立 实验前12 h禁食，定量饮水。将1％链脲佐菌素（streptozotocin, STZ）溶液，以60 mg/kg剂量腹腔内注射2 d。3 d后动物血糖浓度大于16.7 mmol/L及尿糖为（++++）时，即成糖尿病鼠模型。参照付小兵等［3］全层皮肤缺损法制成动物体表溃疡模型，将糖尿病大鼠用盐酸氯胺酮（100 mg/kg）腹腔注射麻醉后背部备皮，在脊椎两侧分别作直径15 mm的圆形标记，在无菌条件下，用外科方法切除标记处全层皮肤，止血后用无菌纱布覆盖，即成糖尿病溃疡模型。造模后每只大鼠每日予青霉素40万U肌肉注射，连续4 d。
1.6 实验动物分组及给药方法 60只大鼠先随机抽取10只为正常对照组；其余50只大鼠建立糖尿病溃疡模型，成模后再随机分为益气化瘀组、益气组、化瘀组、贝复济组和模型组。各组于造模后次日开始给药，换药前均以1/5 000呋喃西林溶液清洁创面。正常对照组及模型组外敷单层生理盐水纱布，生理盐水灌胃，1次/d；益气化瘀组、益气组和化瘀组外敷单层生理盐水纱布，中药灌胃，1次/d；贝复济组灌服等量生理盐水，外敷以贝复济浸透纱布（60 U/cm2），按创面大小剪成小块贴于创面上，然后均在创面上加盖两层消毒干纱布，用胶布“丰”字形固定。连续用药7 d，用药后第8天，分别将动物麻醉（盐酸氯免费论文网 【http://www.51lunwen.net】胺酮），取局部创面新生肉芽组织为所需实验样品。
1.7 实验方法
1.7.1 免疫组织化学SP法及图像分析 每组随机抽取8个标本作为实验样本，取4 μm石蜡切片，常规脱蜡，PBS冲洗3次，3 min/次；3％ H2O2室温20 min，PBS冲洗3次，3 min/次；柠檬酸盐缓冲液中微波处理（98 ℃）2次，10 min/次；10%正常血清封闭内源性非特异性抗原，室温30 min，一抗4 ℃过夜，PBS冲洗3次，3 min/次；生物素化羊抗兔IgG 1∶200，37 ℃ 30 min，PBS冲洗3次，3 min/次；StreptavidinHRP 1∶200，37 ℃ 30 min，PBS冲洗3次，3 min/次；DAB显色8～12 min，水洗；苏木素衬染，水洗，吹干，树脂封片。显微镜下观察，有棕黄染色者为阳性。采用IMS细胞图像分析系统，对各组免疫组化切片进行图像分析。根据各组切片中的染色条件，在统一阈值下进行。在10倍物镜下，每张切片随机选取3个视野，输入图像，测定各组在统一光度下阳性细胞的总面积。
1.7.2 Western blotting法 每组随机抽取6个标本作为实验样本，分别取大约200 mg组织制备样品，提取创面肉芽组织总蛋白，各样品取30 μg上样，Marker取10 μl上样（上样前按说明书进行预处理），进行SDS聚丙烯酰胺凝胶电泳。电转移至硝酸纤维膜上，用5%脱脂奶粉封闭，分别与特异性的TGFβ1抗体进行孵育，充分洗涤后孵育HRP标记山羊抗小鼠抗体，电化学发光，X线摄片。用Quantity One 4.3.1（Biorad）软件对照片进行扫描分析，测定蛋白表达量。
1.8 统计学方法 采用SPSS 11.5统计软件，以方差分析比较各组间TGFβ1表达水平的差异。
2 结果
2.1 免疫组织化学法检测各组创面肉芽组织中TGFβ1的表达水平 模型组TGFβ1表达明显低于正常对照组（P＜0.01）；益气化瘀组TGFβ1表达量高于益气组、化瘀组、贝复济组和模型组（P＜0.05或P＜0.01），与正常对照组相比，差异无统计学意义（P＞0.05）；益气组和化瘀组的TGFβ1表达量也明显高于模型组（P＜0.01），与贝复济组相比，差异无统计学意义（P＞0.05）；益气组和化瘀组相比，差异无统计学意义（P＞0.05）。见表1、图1。
2.2 Western blotting法检测各组创面肉芽组织中TGFβ1的表达水平 模型组TGFβ1表达明显低于正常对照组（P＜0.01）；益气化瘀组TGFβ1表达量明显高于益气组、化瘀组、贝复济组和模型组（P＜0.01），与正常对照组相比，差异无统计学意义（P＞0.05）；益气组和化瘀组明显高于模型组（P＜0.01），益气组和化瘀组相比，差异无统计学意义（P＞0.05）。见表1、图2。
表1 各组创面TGFβ1的表达（略）
Table 1 TGFβ1 expression of skin ulcers in rats with diabetes
*P＜0.05, **P＜0.01, vs untreated group; △P＜0.05, △△P＜0.01, vs normal control group; ▲P＜0.05, ▲▲P＜0.01, vs Yiqi Recipetreated group; □P＜0.05, □□P＜0.01, vs Hu
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